Crisomélido del boniato

Biología

El ciclo biológico de T. nigritus está influenciado por la temperatura ambiente. Con temperatura promedio de 28,5 ±1,2ºC y humedad relativa de 76±7,6%, comprendida en el período mayo-julio/2006, el ciclo biológico del insecto osciló entre 64-68 días, el cual difirió significativamente con los valores alcanzados en el período de noviembre/2005–febrero a 23,0±2,2ºC y humedad relativa 78±7,5% (97-104 días).

Descripción de los estados de desarrollo

Descripción de las puestas y los huevos

La hembra sitúa las puestas en el suelo, en la base del esqueje; los huevos son colocados en grupos, unidos unos con otros a través de una sustancia negra que expulsa la hembra a través de su ovipositor. Los huevos son de forma oval, de ápices redondeados, corion liso y traslúcido; color amarillo pálido al inicio y con tonalidades amarillo-naranja después del segundo día de haber sido colocados. Presentan un largo de 1,01 a 1,05mm, con un ancho entre 0,41 a 0,44mm.

Descripción de las larvas
Las larvas son escarabeiformes, de color blanco cremoso. Habitan en el suelo y se deslizan hacia la raíz tuberosa para alimentarse y cuando no se alimentan se les observa en una cavidad que construyen con partículas de suelo, donde permanecen guarecidas, en las que definitivamente se albergan durante el estado de pupa .

El estado de larva presenta tres instares. Las larvas de primer instar miden entre 1,12-1,28mm de longitud, con un ancho de cápsula cefálica entre 0,16-0,24mm . En el segundo instar el largo oscila entre 2,0-2,8mm y el ancho de cápsula cefálica entre 0,32 - 0,44mm. En el tercer instar la longitud de su cuerpo varía entre 5,21 - 7,13mm y el ancho de la cápsula cefálica invariablemente es de 0,99mm.

Es importante destacar que las larvas son resistentes a períodos de extrema sequía y escasez de alimento.

Descripción de pupas y adultos
La pupa es libre y de color blanquecino. Se le observa en el suelo en una cavidad construida por la larva al final del tercer instar . Cuando el adulto abandona la misma, se pueden observar en su interior la presencia de las exuvias.

Los adultos, además de observarse en el follaje, también se encuentran en la hojarasca sobre el suelo y al igual que Cylas formicarius F., se hacen los muertos cuando son perturbados. El cuerpo es oblongo, de color pardo claro con una tonalidad negra en la base de los élitros cuando son inmaduros, los que definitivamente se tornan negros brillantes. Las hembras son de mayor tamaño que los machos. La longitud del cuerpo oscila entre 5,31-6,30 mm y el ancho en la base de los élitros puede medir desde 2,98 - 3,81mm. La hembra solo necesita copular una vez con el macho para continuar ovipositando el resto de su vida.

Oviposición y longevidad de adultos de T. nigritus en condiciones de laboratorio
Se demostró que la temperatura ambiente influyó en la oviposición de T. nigritus lo que incidió en que el inicio de la oviposición fue en menor número de días, fue mayor el número de días que la hembra no ovipositó y en los 32,45 días que ovipositó, se contabilizaron un total de 657 huevos, de ellos más del 90% fértiles.

T. nigritus necesitó varios días para iniciar la oviposición independientemente del período evaluado. En el presente trabajo se encontró que la hembra pudo ovipositar como máximo 773 huevos en toda su vida. Resultados similares fueron descritos por Santoro et al., (1980), quienes determinaron que la fecundidad de T. nigritus nitidulus fue de 798 huevos. Sin embargo, en esta misma especie Branon (1938) describió que la hembra ovipositó durante toda su vida un total de 50 huevos.

En observaciones realizadas anteriormente en el laboratorio de Entomología de Instituto de Viandas Tropicales (INIVIT), se determinó que la hembra de T. nigritus necesitó realizar una sola cópula, para luego seguir ovipositando por el resto de su vida, como sucedió con Leptinotarsa decemlineata, según lo refirió Domínguez (1971).

Lesiones al follaje

Los adultos devoran el follaje desde el margen hacia dentro, con comeduras en forma de media luna (A) y posteriormente realizan orificios en el interior de la hoja, los que se agrandan al unirse varios de estos (B), y presentan el borde de la lesión en forma aserrada, el que al secarse muestra la apariencia de pequeños dientecitos (C).

Lesiones de T. nigritus al follaje

En campos con altas poblaciones (60 adultos por planta), la plaga se alimenta de todo el limbo foliar excepto de las nervaduras, lo que imposibilita la venta del esqueje como material de propagación .

Lesiones en la raíz tuberosa

En la raíz tuberosa se observan relieves irregulares en forma de surco, los que llegan a cubrir toda la corteza. De igual modo, la larva realiza orificios de 5,0mm de diámetro, con cavidades por debajo de la epidermis entre 1,0 a 1,5cm de profundidad.

Raíces tuberosas con lesiones causadas por T. nigritus

Las lesiones provocadas por T. nigritus sobre la raíz tuberosa, provocan pérdidas en la calidad comercial, ya que el insecto daña su apariencia, por lo que disminuye el valor de la producción. Sin embargo, una vez que se elimina la corteza dañada, el boniato está apto para el consumo y no presenta ni olor ni sabor desagradable como sucede con las afectaciones realizadas por C. formicarius, las que inutilizan a la raíz tuberosa para el consumo humano y animal.
Las larvas también se alimentan de las raíces que brotan de las ¾ partes del esqueje recién plantado y provocan la necrosis de las mismas. En el esqueje se observan áreas raspadas y perforaciones de 3,0 mm de profundidad.

Susceptibilidad de larvas y pupas de T. nigritus al nematodo entomopatógeno Heterorhabditis indica Poinar en condiciones de laboratorio

T. nigritus es una plaga del suelo que se encuentra ampliamente distribuida por todo el territorio nacional y los daños que ocasiona a las raíces tuberosas de boniato al momento de la cosecha, se han incrementado considerablemente en los últimos años. (Castellón y Maza, 2010) Según Jackson et al. (2004) los insectos del boniato son fáciles de controlar con técnicas de manejo integrado. En este sentido Cuba ha obtenido resultados alentadores en el manejo de Cylas formicarius F. con el empleo de hongos entomopatógenos (Castellón et al., 1996) y aunque se aplican micoinsecticidas para el control de plagas de coleópteros (Pérez, 2004), en la literatura internacional consultada no existen referencias relacionadas con la introducción de la lucha biológica en el manejo de T. nigritus. Según estudios realizados por Hanula (1993) y Shapiro y Glazer (1996), ha quedado demostrado que las plagas del suelo son susceptibles a los nematodos entomopatógenos aplicados como suspensión acuosa a altas concentraciones o en el interior de larvas de Galleria mellonella (L.) (Lepidoptera: Pyralidae). En el Instituto de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT) se realizaron ensayos de laboratorio donde quedó demostrado que las larvas y pupas de T. nigritus manifestaron susceptibilidad al nematodo entomopatógeno H. indica en condiciones de laboratorio. El porcentaje de mortalidad para larvas y pupas aumentó según se incrementó la concentración de JI.suelo^-1 A las 96 horas y a partir de los 600 JI.suelo^-1 se observó que la mortalidad en larvas y pupas fue superior al 50% . El 100% de mortalidad para ambos casos se produjo a la concentración de 1 200 JI.suelo^-1, lo que demostró que H. indica cepa P₂M fue efectiva para causar la muerte de T. nigritus. Las larvas parasitadas tomaron un color pardo rojizo y las pupas una coloración pardo claro (Figura 1), evidenciado este cambio de coloración por las especies del género Heterorhabditis (Woodring and Kaya, 1988). Diez días después a la inoculación, los nematodos (JI) emergieron del interior de los cadáveres, y se observaron sobre la superficie de los mismos (Figura 2)

Figura 1. Larva y pupa de T. nigritus con síntomas típicos de infestación por H. indica

Figura 2. Masa de JI de H. indica cepa P₂M cuando emerge del cuerpo de una pupa de T. nigritus

Es necesario destacar que en experimentos anteriores realizados con larvas del primer instar de T. nigritus, se encontró que las mismas fueron susceptibles a H. indica, aunque el nematodo no logró multiplicarse en el interior de estas. Con relación a este aspecto, diversos autores (Jackson y Brooks 1995; Koppenhöffer et al., 2004; Koppenhöffer y Fuzy 2004) señalaron que son varias las causas que explican las diferencias en el grado de susceptibilidad entre los estados de desarrollo de disímiles especies, dentro de las que se relacionan características de tipo morfológico, fisiológico y hasta genético que influyen en su control como son: la variación ínter-específica en los mecanismos de defensa, el tamaño y comportamiento del hospedante, el diámetro menor de los espiráculos en larvas jóvenes, las placas sobre estos que impiden la penetración del patógeno, la frecuente defecación en la que se expulsa a los nematodos, respuestas defensivas y evasivas de las larvas (así como las asociadas a la edad) donde estados más desarrollados pueden eliminar patógenos invasores, entre otras. Todos estos aspectos nos muestran algunas de las dificultades que tienen que vencer los nematodos entomopatógenos para poder controlar los diferentes estados de la plaga, lo que coincide con lo referido por Forscheler y Gardner (1991) y Melo-Molina et al. (2007) en estudios realizados con larvas de coleópteros del género Phyllophaga.